viernes, 26 de junio de 2009

Practica No. 8-9

Agotamiento en suero sanguíneo en sangre



Primero: Se le saco sangre a un individuo de la mesa el cual fui yo (Vázquez) mi compañero Beltrán me saco sangre después la sangre se metió a un tubo de ensaye después se centrifugo durante 5 minutos y después se vacío a la placa excavada de porcelana después se le echo el liquido febriclin después se vio la sangre en un hoyito el cual la sangre estaba cortada después el docente me pregunto que; Que tipo de sangre era yo y le dije que era O+ y el me dijo si es correcto ese eres tu.


Después: La sangre centrifugada, el líquido amarillo que salio de la sangre se puso una gota en cada círculo de la laminilla de cristal después le echaron a los 6 círculos: FEBRICLIN HUDDLESON, BRUCELLA ABORTUS, TIFICO H, PARATIFICO B, PROTEUS OX-19, TIFICO O y PARATIFICO A después se espero durante varios minutos.


Al último: Se puso en el microscopio para enfocar y se vieron varios pequeños puntitos.

Practica No. 6-7

Tincion de gram


Al principio empezamos a meter el portaobjetos al líquido mientras estuvo 1 minuto
Después se metió a enjuagar en el Lugol después se metió en el agua a enjuagar, se puso en alcohol y después con varios meneos de la mano se seco el portaobjetos después el docente nos dio una gota de liquido.
Después se metió al microscopio y depuse de varios minutos se puedo enfocar
Y en el microscopio se vieron puntos rojos en la muestra que era interdental.

Practica No. 5

Frotis

En esta practica se elaboro la practica de frotis la cual mis compañero y yo realizamos con éxito en las cajas petri, los materiales que se usaron fueron: Mecheros, Caja petri, Agua destilada y asas bacteriológicas.

Después se realizo el frotis mi compañero Beltrán lo realizo con muestra sanguínea y después de varios minutos lo realizo mi compañero Navarro, mi compañera Granados lo realizo con muestra de lechuga y ya por lo ultimo fui yo con la muestra interdental al ultimo el profesor nos dijo que realizáramos nuestro desarrollo el cual es este.

Practica No. 4

Observaciones macroscópicas

Caja 1 y 2

Agar salmonella y shigella
Método de Kass – plasma sanguíneo
Del paciente Javier navarro
27/05/09 12:30hrs (toma muestra)
27/05/09 13:00hrs (siembra)
28/05/09 14:00hrs (revisión a 24hrs)

Se miran pequeños puntitos blancos


Caja 3

Agar de hierro de kligler
Método de cuadricula – agua de lechuga
Elaboración del medio: 25/05/09
Siembra: 25/05/09
Revisión a 24 horas: 28/05/09

Se miran bacteria las cuales son bastantes grandes


Caja 4 y 5

Agar de Mac conkey
Método interdental
Agotamiento
Del los pacientes: Vázquez Edgar y Granados Luz.
Elaboración: 25/05/09
Siembra: 27/05/09
Revisión: 28/05/09

Se miran varios puntos blancos


Caja 6

Agar dextrosa saubouraud
Método estriado muestra de pie.
Del paciente garcía luna
Elaboración: 25/05/09
Siembra: 25/05/09
Revisión 24 hors 28/05/09

Se mira con claridad una mancha muy grande (Hongo)

Practica No.3

Datos del paciente:
Vázquez Guerrero Edgar Eduardo
16 años de edad

Hora: 12:50 P.m. Fecha: 27/05/09



Siembra muestra interdental

Agar de Mac Conkey


En la observación que se realizo se vio, bióxido de carbono y en la siembra se ven varios puntos con un color medio rosa claro que significa que la siembra se esta dando con éxito.
Después que pasaron 24 hrs. Haci se mira el medio de cultivo el cual fue la muestra interdental. Se miran varios puntos rosas en la caja petri.





Vázquez Guerrero Edgar Eduardo
Mesa No. 6

Practica No.1-2

Medios de cultivo

Primero al principio mis compañeros y yo nos pusimos nuestros equipo de bioseguridad, después fuimos por los materiales que íbamos a necesitar para la practica.
Luego hicimos la regla de tres que dio la cantidad de 18.62 después un compañero de la mesa fue por el agua destilada que después de varios minutos se revolvió el polvo BIOXON con el agua destilada, después lo dejamos reposar por varios minutos.


REGLA DE TRES:

65gr – 1000ml 65gr X 19 ml/1000 ml = 1235/1000 = 1.235
X - 19ml

1 caja petri – 19 ml 6 cajas petri X 19 ml/1 caja petri = 114/1 = 114ml
6 cajas petri – X

1 caja petri – 1.235 gr. 6 cajas petri X 1.235/1 = 7.410/1 = 7.410gr
6 cajas petri – X


El vidrio de reloj pesa: 18.62
Agar necesario: 7.410
El vidrio pesara: 26.030

Tinciones

Es un método utilizado para estudiar microorganismos. (no vivos); en estas tinciones se observa morfología, estructura y agrupamientos de microorganismos.

Tipos de Tinciónes:
Tinción Simple: utiliza un solo colorante.

Tinción de Gram:
Utiliza varios colorantes (cristal violeta 1m, Yodo 1m, lavado con alcohol, Safranina 30 seg)

Tinción Ácido Resistente:
Una vez teñidos, conservan su color resistiendo al lavado con ácido mineral reducido. En esta tinción las bacterias ácido resistentes conservan el colorante primario color rosa o rojo, los demás microorganismos son decolorados por el ácido y toman el color azul.

Tinción de Giensa:
El colorante se aplica a un frotis de sangre y se utiliza cuando se sospeche de protozoos en la sangre para observar materias núcleos de la células.

Tinción de Esporas:
Se usa verde de malaquita en contraste con safranina.

Tinción de Cápsula:
Colorante nigrosuna, aquí se observa microorganismos encapsulados creando resistencias.

Tinción de Flagelos:
Se usa mordiente el cual aumenta el tamaño del microorganismo.

Endósporas:
Son unos cuerpos resistentes que se producen en el interior de la célula los cuales contienen los componentes necesarios para conservar la vida.
Las esporas pueden situarse en el centro de la célula o en situaciones excéntricas cerca de un extremo de la misma.

Levaduras:
Son esféricas, elípticas y cilíndricos, su tamaño varía notablemente. Son hongos cuya forma corriente y dominante de crecimiento es unicelular.

Las Cápsulas:
Son estructuras grueso viscosas gelatinosas que rodean las células de algunas especies.

Sarcina:
Son anaerobios obligados y son extremadamente ácido – tolerantes que pueden fermentar azúcares y crecer a pH inferior a 2.
Este género comprende 2 especies de bacterias que se dividen en tres planos perpendiculares para producir paquetes de 8 en una célula.

Bacillus Cereus:
La mayoría se encuentra en el suelo o en partículas de polvo en suspensión y son uno de los organismos del género Bacillus que pueden ser aislados fácilmente.
Puesto que los formadores de esporas pueden aislarse selectivamente a partir del suelo, alimentos o de otro material dejando las muestras a 80 ºC durante 10 minutos.
Los bácillus suelen crecer en medios sistemáticos que contengan azúcares, ácidos orgánicos, alcoholes, etc, como única fuente de carbono y amoníaco como única fuente de nitrógeno.

Análisis de Resultados:
Existe varios tipos de tinciones de los cuales estudiamos:
Tinción de Gram
Tinción simple
Tinción de esporas
Tinción de Gram:
Dividida en gram positivo y gram negativo, en el caso de los gram (+) la muestra fue sarcina, puesto que una tonalidad violeta fijada en su estructura determina la presencia de la misma puesto que fijó en su estructura el cristal violeta.
Y en el gran (-) utilizamos salmonella identificada por la presencia de muchas estructura un poco triangulares de color rojo.
En la muestra de la práctica anterior 3 eran gran positivo por su coloración morada.

Tinción Simple:
Estudia levaduras, en este experimento se usa un solo colorante que fue azul de metileno, donde observamos que las levaduras tenían cocos. Estas células bacterianas difieren desde el punto de vista químico de su medio exterior y por eso se tiñen contrastando con su alrededor.

Tinción de Esporas:
La bacteria es una estructura muy pequeña, sin embargo, por medio de esta tinción pudimos observar la estructura interna de la célula bacteriana, particularmente las endosporas, en este experimento se utiliza una tinción simple debido a que la misma permite que se coloree toda la célula excepto la espora que se observa de un tamaño bien aceptable.